Materiales Para Práctica No. 8 Tercer Parcial
Tema: Aglutinacion
1-laminilla de cristal
2-Tubo de ensaye
3-Palillos de madera
4-Torundas de algodón- torniquete
5-Centrifuga
6-Microscopio
7-Pipeta Pasteur con vulvo
8-Papel secante
9-Papel para mesa de laboratorio
10-Reactivo febriclin
11-¨Paciente¨ sangre fresca
12-Hoja de solicitud de examen
Hoja de laboratorio
Hoja de indicación al paciente
13-Libro Inmunologia
-Salmonella
-Brucella
-Proteus
-Registro del alumno
viernes, 15 de mayo de 2009
miércoles, 13 de mayo de 2009
INVESTIGACCION No. 3 MEDIOS DE CULTIVO
MEDIO DE CULTIVO
Uno de los sistemas más importantes para la identificación de microorganismos es observar su crecimiento en sustancias alimenticias artificiales preparadas en el laboratorio. El material alimenticio en el que crecen los microorganismos es el Medio de Cultivo y el crecimiento de los microorganismos es el Cultivo. Se han preparado más de 10.000 medios de cultivo diferentes.
Para que las bacterias crezcan adecuadamente en un medio de cultivo artificial debe reunir una serie de condiciones como son: temperatura, grado de humedad y presión de oxígeno adecuado, así como un grado correcto de acidez o alcalinidad. Un medio de cultivo debe contener los nutrientes y factores de crecimiento necesarios y debe estar exento de todo microorganismo contaminante.
La mayoría de las bacterias patógenas requieren nutrientes complejos similares en composición a los líquidos orgánicos del cuerpo humano. Por eso, la base de muchos medios de cultivo es una infusión de extractos de carne y Peptona a la que se añadirán otros ingredientes.
El agar es un elemento solidificante muy empleado para la preparación de medios de cultivo. Se licua completamente a la temperatura del agua hirviendo y se solidifica al enfriarse a 40 grados. Con mínimas excepciones no tiene efecto sobre el crecimiento de las bacterias y no es atacado por aquellas que crecen en él. La Gelatina es otro agente solidificante pero se emplea mucho menos ya que bastantes bacterias provocan su licuación.
SIEMBRA
Sembrar es introducir artificialmente una porción de muestra en un medio adecuado, con el fin de iniciar un cultivo microbiano. Luego de sembrado, el medio de cultivo se incuba a una temperatura adecuada para el crecimiento.
La siembra puede realizarse en medio líquido, sólido o semisólido, utilizando punta, ansa, hisopo o pipeta estéril.
Cultivo en medio líquido
Se realiza en tubos o en matraces. El crecimiento se puede manifestar por enturbiamiento, por formación de velo o película, o por sedimento.
Cultivo en medio sólido
Puede ser en tubos o placas.
a) Tubos con agar inclinado. Para sembrarlos, se mueve el ansa o la punta suavemente sobre la superficie del agar con un movimiento en zigzag desde el fondo hasta la parte superior, cuidando de no dañar el agar.
b) Tubos sin inclinar. Se siembran introduciendo una punta en el centro del agar. También se llama siembra por picadura.
c) Siembra en placas. Puede ser en superficie o incorporada.
CLASIFICACIÓN DE LOS MEDIOS DE CULTIVO
MEDIOS ENRIQUECIDOS
Algunos microorganismos no son capaces de desarrollarse en medios de cultivo normales. Para cultivarlos necesitamos añadir sustancias altamente nutritivas como sangre, suero, extractos de tejidos animales.
MEDIOS SELECTIVOS
Contienen uno o varios compuestos que inhiben el crecimiento de un determinado tipo de microorganismos y no afectan a otros tipos. Otra manera es modificar la fuente de carbono; si sustituimos la glucosa por maltosa, seleccionamos aquellos microorganismos capaces de digerirla.
MEDIOS DIFERENCIALES
Contienen distintos compuestos químicos o indicadores sobre los que determinados microorganismos adquiere coloraciones específicas o reaccionan de una manera determinada.
MEDIOS SELECTIVOS Y DIFERENCIALES
Se usa para detectar E. Coli y Salmonella. E. Coli es tolerante a la lactosa. Al digerirla, libera ácidos, por lo que se crea un medio ácido y el indicador se pone rojo. Salmonella no tolera la lactosa, por lo que no formará ácidos y formará colonias incoloras.
CULTIVOS PUROS: MEDIOS DE OBTENCIÓN
Los microorganismos en estado natural crecen de forma heterogénea o mixta. Cuando queremos estudiar un microorganismo dado, debemos aislarlo. Un cultivo puro es aquel que contiene un solo tipo de microorganismo.
Uno de los sistemas más importantes para la identificación de microorganismos es observar su crecimiento en sustancias alimenticias artificiales preparadas en el laboratorio. El material alimenticio en el que crecen los microorganismos es el Medio de Cultivo y el crecimiento de los microorganismos es el Cultivo. Se han preparado más de 10.000 medios de cultivo diferentes.
Para que las bacterias crezcan adecuadamente en un medio de cultivo artificial debe reunir una serie de condiciones como son: temperatura, grado de humedad y presión de oxígeno adecuado, así como un grado correcto de acidez o alcalinidad. Un medio de cultivo debe contener los nutrientes y factores de crecimiento necesarios y debe estar exento de todo microorganismo contaminante.
La mayoría de las bacterias patógenas requieren nutrientes complejos similares en composición a los líquidos orgánicos del cuerpo humano. Por eso, la base de muchos medios de cultivo es una infusión de extractos de carne y Peptona a la que se añadirán otros ingredientes.
El agar es un elemento solidificante muy empleado para la preparación de medios de cultivo. Se licua completamente a la temperatura del agua hirviendo y se solidifica al enfriarse a 40 grados. Con mínimas excepciones no tiene efecto sobre el crecimiento de las bacterias y no es atacado por aquellas que crecen en él. La Gelatina es otro agente solidificante pero se emplea mucho menos ya que bastantes bacterias provocan su licuación.
SIEMBRA
Sembrar es introducir artificialmente una porción de muestra en un medio adecuado, con el fin de iniciar un cultivo microbiano. Luego de sembrado, el medio de cultivo se incuba a una temperatura adecuada para el crecimiento.
La siembra puede realizarse en medio líquido, sólido o semisólido, utilizando punta, ansa, hisopo o pipeta estéril.
Cultivo en medio líquido
Se realiza en tubos o en matraces. El crecimiento se puede manifestar por enturbiamiento, por formación de velo o película, o por sedimento.
Cultivo en medio sólido
Puede ser en tubos o placas.
a) Tubos con agar inclinado. Para sembrarlos, se mueve el ansa o la punta suavemente sobre la superficie del agar con un movimiento en zigzag desde el fondo hasta la parte superior, cuidando de no dañar el agar.
b) Tubos sin inclinar. Se siembran introduciendo una punta en el centro del agar. También se llama siembra por picadura.
c) Siembra en placas. Puede ser en superficie o incorporada.
CLASIFICACIÓN DE LOS MEDIOS DE CULTIVO
MEDIOS ENRIQUECIDOS
Algunos microorganismos no son capaces de desarrollarse en medios de cultivo normales. Para cultivarlos necesitamos añadir sustancias altamente nutritivas como sangre, suero, extractos de tejidos animales.
MEDIOS SELECTIVOS
Contienen uno o varios compuestos que inhiben el crecimiento de un determinado tipo de microorganismos y no afectan a otros tipos. Otra manera es modificar la fuente de carbono; si sustituimos la glucosa por maltosa, seleccionamos aquellos microorganismos capaces de digerirla.
MEDIOS DIFERENCIALES
Contienen distintos compuestos químicos o indicadores sobre los que determinados microorganismos adquiere coloraciones específicas o reaccionan de una manera determinada.
MEDIOS SELECTIVOS Y DIFERENCIALES
Se usa para detectar E. Coli y Salmonella. E. Coli es tolerante a la lactosa. Al digerirla, libera ácidos, por lo que se crea un medio ácido y el indicador se pone rojo. Salmonella no tolera la lactosa, por lo que no formará ácidos y formará colonias incoloras.
CULTIVOS PUROS: MEDIOS DE OBTENCIÓN
Los microorganismos en estado natural crecen de forma heterogénea o mixta. Cuando queremos estudiar un microorganismo dado, debemos aislarlo. Un cultivo puro es aquel que contiene un solo tipo de microorganismo.
TAREA No. 2 INVESTIGACION DE TINCION
Tinción:
Las tinciones se combinan químicamente con el protoplasma bacteriano; si la célula no ha muerto el proceso termina de hacerlo. El método, por consiguiente, es bastante drástico y puede producir artificios.
Las tinciones mas frecuente son sales. Las tinciones básicas consiste en un catión coloreado unido a un anión incoloro, mientras las ácidas constituyen exactamente lo contrario, unido a dos cationes. Las células bacterianas son abundantes en ácidos nucleicos, los cuales portan cargas negativas en formas de fosfatos.
Los colorantes ácidos no tiñen a las células bacterias, y por tanto, pueden utilizarse para teñir al fondo con un color de contraste.
Las tinciones básicas tiñen uniformemente en las células bacterianas, a menos que antes de destruyan el ARN del citoplasma. También se pueden usar técnicas de tinción especiales para flagelos, membranas celulares, paredes celulares, gránulos, nucleótidos y esporas.
Clasificación de las tinciones:
La tinción de Gram. o coloración Gram. es un tipo de tinción diferencial empleado en microbiología para la visualización de bacterias, sobre todo en muestras clínicas. Debe su nombre al bacteriólogo danés Christian Gram., que desarrolló la técnica en 1884. Se utiliza tanto para poder referirse a la morfología celular bacteriana como para poder realizar una primera aproximación a la diferenciación bacteriana, considerándose Bacteria Gramo positiva a las bacterias que se visualizan de color violeta y Bacteria Gram. Negativa a las que se visualizan de color rosa.
La tinción de Ziehl-Neelsen (BAAR) es una técnica de tinción diferencial rápida y económica, para la identificación de macroorganismos patógenos, por ejemplo M. tuberculosis. Este método se basa en que las paredes celulares de ciertos parásitos y bacterias contienen ácidos grasos (por ejemplo, el ácido micólico) de cadena larga (50 a 90 átomos de carbono) que les confieren la propiedad de resistir la decoloración con alcohol-ácido, después de la tinción con colorantes básicos. Por esto se denominan bacilos ácido-alcohol resistentes o BAAR. Las mico bacterias como M. tuberculosis y M. marinum y los parásitos coccídeos como Cryptosporidium se caracterizan por sus propiedades de ácido-alcohol resistencia.
La coloración clásica de Ziehl-Neelsen requiere calentamiento para que el colorante atraviese la pared bacteriana que contiene ceras.
En una tinción directa el colorante interacciona directamente con el sustrato. En una tinción indirecta se hace interaccionar en primer lugar a una sustancia química denominada "mordiente" con el sustrato la cual permite la posterior interacción del colorante. Usualmente los mordientes son sales, hidróxidos o alumbres de metales bivalentes o trivalentes.
• Tinciones simples:
O tinción negativa: se usa un colorante ácido, nigrosina o tinta china, que no entra en la célula de modo que estas no se observan teñidas, lo que se ve de color es el fondo.
Frotis.
Secado al aire
Colorante.
Visionado a 100X
o tinción básica: se usa azul de metileno que si tiñe a las células.
Frotis.
Fijación.
Colorante.
Lavado con agua destilada.
Secado al aire.
Visionado a 100X.
• Tinciones diferenciales:
o tinción Gram: se basa en las diferencias entre las paredes de las Gram + y las Gram - , el primer colorante tiñe todas las células, en las G+ entra y con la acción del lugol formara una molécula muy grande que no sale de la célula, pero el disolvente, etanol, disolverá la capa d lipopolisacaridos de las Gram negativas donde esta el 1º colorante, ya que no pudo atravesar esta barrera, de modo que al añadir el 2º será este el único que les de color.
Extensión.
Fijación.
Colorante básico, cristal violeta, entra en las células.
Lavado con agua destilada.
Mordiente, lugol: el colorante básico ya no puede salir de G+.
Lavado con etanol que disuelve la capa de lipopolisacaridos de G- donde esta el 1º colorante.
Colorante de contraste básico, safranina o rojo metilo . que tiñe a las G-.
a) Azul de metileno (Tinción positiva). Permite teñir el interior celular. Tiñe
Microorganismos procarióticos (vivos o muertos). Los eucarióticos sólo se tiñen si están
Muertos. Algunas estructuras, como los corpúsculos meta cromáticos, se tiñen más
Intensamente con este colorante que el resto de la célula.
El azul de metileno se usa como tintura para teñir ciertas partes del cuerpo antes o durante la cirugía. Su uso es principalmente como antiséptico y cicatrizado interno. También se utiliza como colorante en las tinciones para la observación en el microscopio.
CENTRO DE BACHILLERATO TECNOLOGICO INDUSTRIAL Y DE SERVICIOS No.155
Materia: Operar Equipo y Materia De Laboratorio
Maestro: Doc. Víctor Manuel Alfaro
Nombre del Alumno: Ávila Hernández Kenia Denisse
Tema: Tarea No. 3 Clasificación de Tinción
Grupo: 2LM
Fecha: 11/ 05/09
Las tinciones se combinan químicamente con el protoplasma bacteriano; si la célula no ha muerto el proceso termina de hacerlo. El método, por consiguiente, es bastante drástico y puede producir artificios.
Las tinciones mas frecuente son sales. Las tinciones básicas consiste en un catión coloreado unido a un anión incoloro, mientras las ácidas constituyen exactamente lo contrario, unido a dos cationes. Las células bacterianas son abundantes en ácidos nucleicos, los cuales portan cargas negativas en formas de fosfatos.
Los colorantes ácidos no tiñen a las células bacterias, y por tanto, pueden utilizarse para teñir al fondo con un color de contraste.
Las tinciones básicas tiñen uniformemente en las células bacterianas, a menos que antes de destruyan el ARN del citoplasma. También se pueden usar técnicas de tinción especiales para flagelos, membranas celulares, paredes celulares, gránulos, nucleótidos y esporas.
Clasificación de las tinciones:
La tinción de Gram. o coloración Gram. es un tipo de tinción diferencial empleado en microbiología para la visualización de bacterias, sobre todo en muestras clínicas. Debe su nombre al bacteriólogo danés Christian Gram., que desarrolló la técnica en 1884. Se utiliza tanto para poder referirse a la morfología celular bacteriana como para poder realizar una primera aproximación a la diferenciación bacteriana, considerándose Bacteria Gramo positiva a las bacterias que se visualizan de color violeta y Bacteria Gram. Negativa a las que se visualizan de color rosa.
La tinción de Ziehl-Neelsen (BAAR) es una técnica de tinción diferencial rápida y económica, para la identificación de macroorganismos patógenos, por ejemplo M. tuberculosis. Este método se basa en que las paredes celulares de ciertos parásitos y bacterias contienen ácidos grasos (por ejemplo, el ácido micólico) de cadena larga (50 a 90 átomos de carbono) que les confieren la propiedad de resistir la decoloración con alcohol-ácido, después de la tinción con colorantes básicos. Por esto se denominan bacilos ácido-alcohol resistentes o BAAR. Las mico bacterias como M. tuberculosis y M. marinum y los parásitos coccídeos como Cryptosporidium se caracterizan por sus propiedades de ácido-alcohol resistencia.
La coloración clásica de Ziehl-Neelsen requiere calentamiento para que el colorante atraviese la pared bacteriana que contiene ceras.
En una tinción directa el colorante interacciona directamente con el sustrato. En una tinción indirecta se hace interaccionar en primer lugar a una sustancia química denominada "mordiente" con el sustrato la cual permite la posterior interacción del colorante. Usualmente los mordientes son sales, hidróxidos o alumbres de metales bivalentes o trivalentes.
• Tinciones simples:
O tinción negativa: se usa un colorante ácido, nigrosina o tinta china, que no entra en la célula de modo que estas no se observan teñidas, lo que se ve de color es el fondo.
Frotis.
Secado al aire
Colorante.
Visionado a 100X
o tinción básica: se usa azul de metileno que si tiñe a las células.
Frotis.
Fijación.
Colorante.
Lavado con agua destilada.
Secado al aire.
Visionado a 100X.
• Tinciones diferenciales:
o tinción Gram: se basa en las diferencias entre las paredes de las Gram + y las Gram - , el primer colorante tiñe todas las células, en las G+ entra y con la acción del lugol formara una molécula muy grande que no sale de la célula, pero el disolvente, etanol, disolverá la capa d lipopolisacaridos de las Gram negativas donde esta el 1º colorante, ya que no pudo atravesar esta barrera, de modo que al añadir el 2º será este el único que les de color.
Extensión.
Fijación.
Colorante básico, cristal violeta, entra en las células.
Lavado con agua destilada.
Mordiente, lugol: el colorante básico ya no puede salir de G+.
Lavado con etanol que disuelve la capa de lipopolisacaridos de G- donde esta el 1º colorante.
Colorante de contraste básico, safranina o rojo metilo . que tiñe a las G-.
a) Azul de metileno (Tinción positiva). Permite teñir el interior celular. Tiñe
Microorganismos procarióticos (vivos o muertos). Los eucarióticos sólo se tiñen si están
Muertos. Algunas estructuras, como los corpúsculos meta cromáticos, se tiñen más
Intensamente con este colorante que el resto de la célula.
El azul de metileno se usa como tintura para teñir ciertas partes del cuerpo antes o durante la cirugía. Su uso es principalmente como antiséptico y cicatrizado interno. También se utiliza como colorante en las tinciones para la observación en el microscopio.
CENTRO DE BACHILLERATO TECNOLOGICO INDUSTRIAL Y DE SERVICIOS No.155
Materia: Operar Equipo y Materia De Laboratorio
Maestro: Doc. Víctor Manuel Alfaro
Nombre del Alumno: Ávila Hernández Kenia Denisse
Tema: Tarea No. 3 Clasificación de Tinción
Grupo: 2LM
Fecha: 11/ 05/09
INVESTIGACCION
ESHERICHIA. COLI
Esherichia Coli: Las bacterias del genero E. coli, son Gram.-negativas tiene forma de barra y pertenecen a la familia Enterobacteriaceae Esta bacteria es un habitante común de los intestinos e todos esta bacteria es la especie dominante encontrada en la heces. Normalmente cumple una función importante en el cuerpo, suprimiendo el crecimiento de especies dañinas de bacterias así como también sintetizando cantidades apreciables de vitaminas. Son pocas las cepas de E. coli capaces de causar enfermedades a los humanos a través de diferentes mecanismos. Entre ellas están las cepas enteroinvacivas (EIEC) responsables de una forma de la distancia bacilar.No obstante, es desconocido a un el tiempo de alimentos que pueden hospedar a estas bacterias patógenas Salmonella Thypi
Proteus (bacteria)
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Proteus
Proteus vulgaris en una placa de MacConkey
Clasificación científica
Dominio: Bacteria
Filo:
Proteobacteria
Clase:
Gamma Proteobacteria
Orden:
Enterobacteriales
Familia:
Enterobacteriaceae
Género:
Proteus
Hauser 1885
Species
P. mirabilis
P. morganii
P. penneri
P. rettgeri
P. vulgaris
Proteus es un genero de bacterias gramnegativas, que incluye patógenos responsables de muchas infecciones del tracto urinario.1 Las especies de Proteus normalmente no fermentan lactosa por razón de tener una β galactosidasa, pero algunas se han mostrado capaces de hacerlo en el test TSI (Triple Sugar Iron). Son oxidasa-negativas y ureasa-positivas. Algunas especies son mótiles.2 Tienden a ser organismos pleomórficos, no esporulados ni capsulados y son productoras de fenilalanina desaminasa.3 Con la excepción de P. mirabilis, todos los Proteus reaccionan negativos con la prueba del indol.
Contenido
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• 1 Hábitat
• 2 Cultivo
• 3 Morfología
• 4 Patogenia
o 4.1 Factores de virulencia
• 5 Referencias
Hábitat [editar]
Proteus es un género de bacterias ubicuos, residentes del tracto intestinal del hombre y otros animales.
Cultivo [editar]
Crecen en medios corrientes y moderadamente selectivos a temperatura corporal de 37ºC. Crecen formando capas diseminadas por virtud de su gran motilidad. Existen variantes inmóviles que forman colonias lisas.
Morfología [editar]
La estructura antigénica está compuesta por antígeno somático O, flagelar H y superficial K. El antígeno flagelar H contribuye a la capacidad invasora de las vías urinarias. La variante X del antígeno somático O está presente en algunas cepas de P. mirabilis. Otros grupos antigénicos definidos son el OX2, OX19 y OXK.4 El grupo OX19 (y a veces el grupo OX2) da reacciones cruzadas (aglutinación) en pacientes con Rickettsia prowazekii y ésa es la base de la prueba de Weil Félix.5
Patogenia [editar]
Hay tres especies que causan infecciones oportunistas en el hombre: P. vulgaris, P. mirabilis, y P. penneri. Causan infecciones urinarias (más del 10% de complicaciones del tracto urinario incluyendo cálculos y lesiones celulares del epitelio renal), enteritis (especialmente en niños), abscesos hepáticos, meningitis, otitis media y neumonía con o sin empiema, entre otros.4 Es un frecuente invasor secundario de quemaduras y heridas, así como infecciones nosocomiales.
Todas las especies de Proteus son resistentes a la ampicilina. P. mirabilis es sensible a la penicilina.
Factores de virulencia [editar]
• Flagelos
• Fimbrias
• Proteínas de membrana
• Ureasa
• Hemolisinas
• No producen toxinas solubles
Referencias [editar]
Salmonella
De Wikipedia, la enciclopedia libre
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Salmonella
Microscopía electrónica de Salmonella typhimurium
Clasificación científica
Reino:
Bacteria
Filo:
Proteobacteria
Clase:
Gamma Proteobacteria
Orden:
Enterobacteriales
Familia:
Enterobacteriaceae
Género:
Salmonella
Especies
(ver taxonomía)
• S. bongori
• S. enterica
o S. choleraesuis
o S. enteritidis
o S. nyanza
o S. paratyphi
o S. typhi
o S. typhimurium
o S. virginia
Salmonella es un género de bacteria que pertenece a la familia Enterobacteriaceae, formado por bacilos gramnegativos, anaerobios facultativos, con flagelos perítricos y que no desarrollan cápsula ni esporas. Son bacterias móviles que producen sulfuro de hidrógeno (H2S). Fermentan glucosa por poseer una enzima especializada, pero no lactosa, y no producen ureasa.
Es un agente zoonótico de distribución universal. Se transmite por contacto directo o contaminación cruzada durante la manipulación, en el procesado de alimentos o en el hogar, también por vía sexual.
Algunas salmonellas son comunes en la piel de tortugas y de muchos reptiles, lo cual puede ser importante cuando se manipulan a la vez este tipo de mascotas y alimentos.
Contenido
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• 1 Taxonomía
• 2 Epidemiología
• 3 Microbiología
• 4 Patogenia
o 4.1 Virulencia
• 5 Tratamiento
• 6 Profilaxis
• 7 Referencias
• 8 Véase también
Taxonomía [editar]
El género Salmonella es de taxonomía difícil, modificada en estos últimos años por el aporte de estudios moleculares de homología de ADN que han clarificado el panorama taxonómico de las enterobacterias.
Para la bacteriología clínica, Salmonella es un bacilo patógeno primario (como Shigella, Yersinia y ciertas cepas de E. coli), anaerobio facultativo, algunos móviles y no fermentan la lactosa. S. typhi es la única serovariedad que no produce gas en la fermentación de los azúcares.
Clásicamente se distinguían tres únicas especies patógenas primarias: S. typhy, S. cholerae-suis y S. enteritidis. A su vez, según la serotipificación de Kauffman y White, eran clasificadas en más de 2000 serotipos en base a los antígenos flagelares H (proteicos) y antígenos somáticos O (fracción polisacárida del lipopolisacárido bacilar). S. typhi posee además un antígeno de virulencia (Vi).
El tratamiento taxonómico actual de Salmonella ha simplificado el espectro, reagrupando todas las cepas (patógenas o no) en dos únicas especies: S. enterica y S. bongori. Ésta última (previamente subespecie V) no es patógena para el ser humano.
La especie S. enterica tiene seis subespecies (a veces presentadas como subgrupos bajo numeración romana):
• I enterica
• II salamae
• IIIa arizonae
• IIIb diarizonae
• IV houtenae
• V S. bongori, ya incluida en una especie distinta
• VI indica
Cada subespecie a su vez, está conformada por diversos serotipos, habiéndose identificado hasta la fecha más de 2500. Una de ellas es S. enterica subsp. enterica (o subgrupo I), se divide en cinco serogrupos: A, B, C, D y E. Cada serogrupo comprende múltiples componentes, son las serovariedades (serotipos).
Esta clasificación implica una terminología de uso poco práctico en la clínica bacteriológica, por lo tanto, en términos médicos, la nomenclatura es diferente y simplificada, pues se consideran los nombres de los serotipos (serovaridades) de Salmonella como si fuesen nombres de especies. Por ejemplo, "Salmonella enterica subgrupo entérica serotipo Typhimurium", se refiere como "Salmonella typhimurium". Estas denominaciones, aunque menos correctas desde el punto de vista taxonómico estricto, son de aceptación mundial.
Con importancia clínico epidemiológica, las más de 2000 serovariedades de Salmonella pueden agruparse en tres divisiones ecológicas (spp. son subespecies):
1. Salmonella spp. adaptadas a vivir en el ser humano, entre ellas, S. typhi, S. paratyphi A, B y C;
2. Salmonella spp. adaptadas a hospederos no humanos, que circunstancialmente pueden producir infección en el hombre, entre ellas, S. Dublín y S. cholerae-suis;
3. Salmonella spp. sin adaptación específica de hospedero, que incluye a unas 1800 serovariedades de amplia distribución en la naturaleza, las cuales causan la mayoría de las salmonelosis en el mundo.
Brucelosis
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Brucelosis
Clasificación y recursos externos
CIE - 10
Un 23.
CIE - 9
023
DiseasesDB
1716
MedlinePlus
000597
Emedicine
med/248
MeSH
D002006
Brucelosis, también denominada fiebre ondulante, o maltés fiebre [1], es sumamente contagiosa zoonosis causada por la ingestión de no esterilizados de leche o carne de animales infectados, o en estrecho contacto con sus secreciones. Brucella spp. son pequeñas, Gram-negativas, no móviles, no formadora de esporas barras, que funcionan como parásitos facultativos intracelulares que causan la enfermedad crónica, que suele persistir de por vida. La brucelosis ha sido reconocido tanto en animales como en seres humanos desde el siglo 19.
Sumario
[hide]
• 1 Historia y la nomenclatura
• 2 La brucelosis en los animales
o 2,1 Brucelosis en el ganado bovino
o 2,2 Brucelosis en el área de Greater Yellowstone
o 2,3 Brucelosis en perros
• 3 La brucelosis en humanos
o 3.1 Los síntomas
o 3.2 Tratamiento y prevención
o 3-3 de guerra biológica
• 4 nombres históricos
• 5 La cultura popular referencias
• 6 Referencias
• 7 Véase también
• 8 Enlaces externos
[Editar] Historia y nomenclatura
La enfermedad que ahora se llama la brucelosis, con el nombre de "fiebre del Mediterráneo", llegó por primera vez a la atención de los británicos médicos en Malta durante la guerra de Crimea en la década de 1850. La relación causal entre el organismo y la enfermedad se estableció por primera vez por el Dr. David Bruce en 1887. [2] [3]
En 1897 danés veterinario Bernhard Bang aislados de Brucella abortus como el agente y el suplementario de la enfermedad de Bang fue asignado. En el uso moderno "de la enfermedad de Bang" es a menudo reducido a sólo "bang", cuando los ganaderos discutir la enfermedad o vacuna.
Maltés médico y arqueólogo Sir Temas Zammit identificado leche cruda como la principal fuente del agente patógeno en 1905, y desde entonces se conoce como Fiebre de Malta o Deni rqiq local. Esta enfermedad en el ganado es también conocido como aborto contagioso y aborto infeccioso.
El nombre popular "fiebre ondulante" proviene de la característica undulance (o "ola-como" la naturaleza) de que la fiebre sube y baja durante semanas en pacientes no tratados. En el siglo 20, este nombre, junto con "brucelosis" (después de Brucella, llamado así por el Dr. Bruce), fue sustituyendo gradualmente el siglo 19 los nombres de "fiebre del Mediterráneo" y "fiebre de Malta".
En 1989, Arabia Saudita, los neurólogos descubrieron neurobrucellosis, una participación en la brucelosis neurológicas. [4] [5]
[Editar] La brucelosis en los animales
Especies que infectan el ganado doméstico se B. melitensis (cabras y ovejas), B. suis (cerdos, véase la brucelosis porcina), B. abortus (ganado y bisontes), B. ovis (ovejas), y B. canis (perros). B. abortus infecta también bisontes y alces en América del Norte y B. suis es endémica en caribú. Brucella especies también han sido aislados de
Tarea No. 1 INVESTIGACION PARAMECIUM Y MICRORGANISMOS
Paramecium
Paramecios
Paramecium aurelia
Clasificación científica
Reino:
Protista
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Paramecios
Paramecium aurelia
Filo:
Ciliophora
Clase:
Oligohymenophorea
Orden:
Peniculida
Familia:
Parameciidae
Género:
Paramecium
Müller, 1773
Los paramecios (género Paramecium) son protozoos ciliados con forma de suela de zapato o elipsoide, habituales en aguas dulces estancadas con abundante materia orgánica, como charcos y estanques. Son probablemente los seres unicelulares mejor conocidos y los protozoos ciliados más estudiados por la Ciencia. El tamaño ordinario de todas las especies de paramecios es de apenas 0'05 milímetros.
Carecen de flagelos, pero los cilios son muy abundantes y recubren toda su superficie. A ellos les corresponde proporcionar movimiento al organismo. La membrana externa absorbe y expulsa regularmente el agua del exterior con el fin de controlar la osmorregulación, proceso dirigido por dos vacuolas contráctiles.
En su anatomía destaca el citostoma, una especie de invaginación situada a todo lo largo del paramecio de la que éste se sirve para capturar el alimento, conformado por partículas orgánicas flotantes y microorganismos menores. El citostoma conduce a una citofaringe antes de que el alimento pase al interior de este protozoo. Otros orgánulos de fácil observación son el núcleo eucariota, situado junto a un "micronúcleo" en el centro del paramecio, y las vacuolas digestivas, que digieren constantemente el alimento capturado. Los desechos se expulsan por exocitosis, mediante vacuolas de secreción que se originan a partir de las digestivas.
Como muchos otros microorganismos, los paramecios se reproducen asexualmente por fisión binaria.
Resumen [editar]
Se trata de un protozoo minúsculo con forma de zapatilla que abunda en lagos, estanques y charcos. Se mueve constantemente, para lo cual se sirve de innumerables hebras microscópicos llamados cilios, con los que golpea el agua a modo de remos. Los paramecios se alimentan de bacterias y otros organismos microscópicos. Para atrapar su alimento, utilizan una boca en forma de ranura.
Especies [editar]
En la actualidad se reconocen 14 especies dentro del género Paramecium, aunque existen varias nombradas pero que se consideran dudosas. Las seguras son las siguientes:
• P. aurelia Ehrenberg, 1838
• P. bursaria Ehrenberg & Focker, 1836
• P. calkinsi Woodruff, 1921
• P. caudatum Ehrenberg, 1838
• P. duboscqui Chatton & Brachon, 1933
• P. jenningsi Diller & Earl, 1958
• P. multimicronucleatum Powers & Mitchell, 1910
• P. nephridiatum von Gelei, 1925
• P. polycaryum Woodruff, 1923
• P. putrinum Claparede & Lachmann, 1858
• P. trichium Stokes, 1885
• P. woodruffi Wenrich, 1928
Obtenido de "http://es.wikipedia.org/wiki/Paramecium"
Categoría: Ciliophora
martes, 12 de mayo de 2009
viernes, 8 de mayo de 2009
REPORTE DE PIPETEO
CENTRO DE BACHILLERATO TECNOLOGICO INDUSTRIAL Y DE SERVICIOS No. 155
MATERIA: Operar Equipo Y Material de Laboratorio
MAESTRO: Víctor Manuel Alfaro
TEMA: Practica pipeteo (Reporte)
NOMBRE DEL ALUMNO: Ávila Hernández Kenia
GRUPO: 2LM
INTRODUCCION
ACONTINUACCION SE PRECENTA EL REPORTE CORESPONDIENTE ALA PRACTICA DE PIPETEO DONDE SE PRECENTA LAS DIFERENTES PIPETAS Y SUS MEDIDAS Y COMO SE UTILIZARON ESTAS, TAMBIEN COMO SE PUSIERON EN PRACTICA NUESTROS CONOCIMIENTOS PARA LA REALIZACION DE LA PRACTICA
OBJETIVO
EL OBJETIVO DE ESTA PRACTICA FUE APRENDER A USAR LAS DIFERENTES PIPETAS Y CONOSER SUS MEDIDAS UTILIZABDO VOLUMEN Y GRADUACCION DE MEDIDAS DE LIQUIDOS PARA ASI APRENDER A USAR LAS PIPETAS PARA PRUEVAS QUE SE REQUIERA EL PIPETEO
MARCO TEORICO
1- PIPETA PASTEUR: Con esta pipeta y con la ayuda del lóbulo, se toma cierta cantidad del líquido y se comprueba en la probeta graduada.
2- PIPETA GARDUADA 10 ml: Con esta pipeta nuevamente cada uno de los integrantes del equipo tomamos una cierta cantidad de de ml y comprobamos en la probeta graduada
3- PIPETA VOLUMETRICA 5ml: Con esta pipeta cada uno de nosotros compr5obamos la cantidad de mililitros que absorbimos.
4- PIPETA DE 1ml: Con esta pipeta confirmamos la medida exacta de 1ml en una probeta graduada.
5- Con esta pipeta cada integrante del equipo escogió cuantos microlitos tomar y gotear, comparando cuantas gotas de la pipeta Pasteur equivale Nos dimos cuenta de que 10.0 microlitos equivale a 2 gotas de la pipeta Pasteur.
CONCLUCION
COMO CONCLUCION FUE INTERESANTE YA QUE APREBDIMOS ALGO NUEVO, TAMBIEN APRENDIMOS A USAR LAS PIPETAS CONOSER SUS MEDIDAS Y DIFERENCIAS Y PUES AMI ME GUSTO LA PRACTICA POR QUE EN EQUIPO ARENDIOS A COMPARAR MEDIDAS EN LAS DIFERENTES PIPETAS
MATERIA: Operar Equipo Y Material de Laboratorio
MAESTRO: Víctor Manuel Alfaro
TEMA: Practica pipeteo (Reporte)
NOMBRE DEL ALUMNO: Ávila Hernández Kenia
GRUPO: 2LM
INTRODUCCION
ACONTINUACCION SE PRECENTA EL REPORTE CORESPONDIENTE ALA PRACTICA DE PIPETEO DONDE SE PRECENTA LAS DIFERENTES PIPETAS Y SUS MEDIDAS Y COMO SE UTILIZARON ESTAS, TAMBIEN COMO SE PUSIERON EN PRACTICA NUESTROS CONOCIMIENTOS PARA LA REALIZACION DE LA PRACTICA
OBJETIVO
EL OBJETIVO DE ESTA PRACTICA FUE APRENDER A USAR LAS DIFERENTES PIPETAS Y CONOSER SUS MEDIDAS UTILIZABDO VOLUMEN Y GRADUACCION DE MEDIDAS DE LIQUIDOS PARA ASI APRENDER A USAR LAS PIPETAS PARA PRUEVAS QUE SE REQUIERA EL PIPETEO
MARCO TEORICO
1- PIPETA PASTEUR: Con esta pipeta y con la ayuda del lóbulo, se toma cierta cantidad del líquido y se comprueba en la probeta graduada.
2- PIPETA GARDUADA 10 ml: Con esta pipeta nuevamente cada uno de los integrantes del equipo tomamos una cierta cantidad de de ml y comprobamos en la probeta graduada
3- PIPETA VOLUMETRICA 5ml: Con esta pipeta cada uno de nosotros compr5obamos la cantidad de mililitros que absorbimos.
4- PIPETA DE 1ml: Con esta pipeta confirmamos la medida exacta de 1ml en una probeta graduada.
5- Con esta pipeta cada integrante del equipo escogió cuantos microlitos tomar y gotear, comparando cuantas gotas de la pipeta Pasteur equivale Nos dimos cuenta de que 10.0 microlitos equivale a 2 gotas de la pipeta Pasteur.
CONCLUCION
COMO CONCLUCION FUE INTERESANTE YA QUE APREBDIMOS ALGO NUEVO, TAMBIEN APRENDIMOS A USAR LAS PIPETAS CONOSER SUS MEDIDAS Y DIFERENCIAS Y PUES AMI ME GUSTO LA PRACTICA POR QUE EN EQUIPO ARENDIOS A COMPARAR MEDIDAS EN LAS DIFERENTES PIPETAS
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